氟化钠是一种丝氨酸/苏氨酸磷酸酶抑制剂。如果感兴趣的蛋白质被磷酸化，这在细胞裂解缓冲液中是很重要的。氟化钠的存在将阻止磷基在研究之前被丝氨酸/苏氨酸磷酸酶去除。它通常与钒酸钠一起添加到细胞裂解缓冲液中，钒酸钠是一种酪氨酸/碱性磷酸酶抑制剂。

正确的答案是电泳迁移率转移试验(EMSA)。在EMSA中，特定的DNA序列被放射性标记，并与蛋白质裂解物或纯化蛋白质一起孵育。然后将蛋白质-DNA混合物装载到非变性凝胶上，按大小分离蛋白质和DNA。被蛋白质结合的DNA比未结合的DNA迁移得慢，而未结合的DNA迁移得快。为了检测放射性，将薄膜暴露在凝胶中，显影和解释。重要的是要记住，放射性是由DNA而不是蛋白质释放的。

正确答案是Western blot。在Western blot中，细胞蛋白裂解物在变性凝胶上运行，并用特定抗体进行检测。学生研究人员可以检测DNA聚合酶蛋白的存在在细胞裂解物使用特定的抗体聚合酶。

EMSAs确定蛋白质与DNA序列结合的能力，而电穿孔、PCR和限制性内切酶切不是检测蛋白质表达的方法。

正确答案是DNA微阵列。在DNA微阵列中，短DNA序列(探针)被标记在微阵列芯片上。同一基因的探针聚集在阵列的同一区域。来自样本的cDNA用荧光染料标记，并在芯片上冲洗。如果某个基因高表达，其cDNA将结合各自的探针，并给予比低表达基因更高的强度。

正确答案是蛋白质的c端是细胞外还是细胞内。这是一种非常常见的实验室技术，用于确定跨膜蛋白的哪个末端是细胞内和细胞外。由于抗体对蛋白质的c端是特异性的，如果蛋白质的c端是细胞内定位的，我们只能在细胞渗透时才能检测到蛋白质。在未渗透的细胞中，抗体将无法进入细胞，但渗透将允许抗体通过质膜并结合c端。如果c端是细胞外的，抗体无论渗透与否都会结合。

所有给出的答案都是将外源DNA引入细胞的有效方法。当与细菌一起工作时，转化是一种通过化学能力将质粒DNA引入细胞的简单方法。电穿孔同时电死细菌和细胞培养细胞以引入外源DNA。如果实验室配备了产生含有外源DNA的活病毒的设备，感染靶细胞也可能是一种可行的方法。最后，转染是指主要用于细胞培养的通过脂质体(含DNA)与细胞膜融合引入外源DNA的过程。

微阵列技术可以同时研究数千个基因的表达水平。虽然微阵列不能告诉你任何关于基因的实际序列，但它们是研究大量基因表达水平的唯一选择。利用PCR研究表达水平是可能的，但不是大规模的。

运行等位酶凝胶是用于这些酶的分子研究的第一个方法之一，这些酶由于具有略微不同的遗传密码(等位基因)而具有略微不同的功能。这个术语特指由遗传变异/等位基因产生的酶变异。

正确的答案是从DNA或RNA中分离出蛋白质和其他杂质。用苯酚和氯仿进行萃取，将蛋白质和其他杂质从DNA和RNA中分离出来(以悬浮的形式)。接下来，根据使用的盐的类型和浓度，研究人员可以选择性地从添加乙醇的混合物中沉淀DNA或RNA。这是一种从不纯来源获得纯的洁净核糖核酸的简单方法。

正确答案是质膜裂解。虽然像十二烷基硫酸钠这样的洗涤剂通常被用作蛋白质变性剂，但它也通过乳化膜结合的脂质和蛋白质来分解质膜。